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Disease Control / Moyens de Lutte

Reducing flea-beetle feeding wounds on canola seedlings with foliar insecticide failed to improve blackleg control

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Accepted 12 Jun 2024, Published online: 16 Jul 2024
 

Abstract

In earlier studies, it was found that Leptosphaeria maculans could readily infect canola via fresh wounds but would require extended leaf wetness to infect intact tissues. We hypothesized that flea beetle feeding wounds might facilitate L. maculans infection under field conditions. Multi-year plot trials were conducted in western Canada to assess the effect of reducing flea beetle feeding wounds on canola seedlings with in-crop insecticide on subsequent blackleg infection. The experiment encompassed susceptible and resistant cultivars seeded into canola stubble from the previous year, with pyrethroid insecticide applied weekly commencing at trace feeding (<5%) to mitigate the insect damage. Fluopyram seed treatment was used as an additional treatment against early blackleg infection. Results from eight station years showed moderate feeding damage by flea beetles and generally high blackleg pressure, with the average disease incidence > 80%. Despite reduced feeding damage due to in-crop insecticide treatment, significant blackleg reduction was not observed. A greenhouse study revealed no correlation between puncture wounds on cotyledons and successful stem infection under high-inoculum conditions, suggesting that reduced insect feeding might not effectively counteract the heavy inoculum pressure resulting from canola residue in field trials. Fluopyram seed treatment did not reduce blackleg substantially, while resistant cultivars consistently exhibited effectiveness. Furthermore, harvested seed from plots with lighter blackleg often displayed lower levels of L. maculans inoculum contamination.

Résumé

Des études antérieures ont montré que Leptosphaeria maculans pouvait facilement infecter le canola par des blessures fraîches, mais qu’il fallait que les feuilles soient mouillées pendant une longue période pour que les tissus intacts soient infectés. Nous avons émis l’hypothèse que les blessures causées par l’alimentation des altises pourraient faciliter l’infection par L. maculans dans les conditions du champ. Des essais pluriannuels en parcelles ont été menés dans l’ouest du Canada pour évaluer l’effet de la réduction des blessures causées par les altises sur les semis de canola à l’aide d’un insecticide en cours de culture sur l’infection subséquente par la jambe noire. L’expérience a porté sur des cultivars sensibles et résistants semés dans des chaumes de canola de l’année précédente, avec application hebdomadaire d’un insecticide pyréthrinoïde à partir de traces d’alimentation (<5%) afin d’atténuer les dommages causés par l’insecte. Le traitement des semences au Fluopyram a été utilisé comme traitement supplémentaire contre l’infection précoce par la jambe noire. Les résultats de huit années-stations ont montré des dégâts alimentaires modérés causés par les altises et une pression généralement élevée de la jambe noire, avec une incidence moyenne de la maladie supérieure à 80 %. Malgré la réduction des dommages causés par l’alimentation grâce au traitement insecticide en cours de culture, aucune réduction significative de la jambe noire n’a été observée. Une étude en serre n’a révélé aucune corrélation entre les blessures par perforation sur les cotylédons et l’infection réussie des tiges dans des conditions d’inoculum élevé, que la réduction de l’alimentation des insectes pourrait ne pas contrecarrer efficacement la forte pression d’inoculum résultant des résidus de canola dans les essais en plein champ. Le traitement des semences au Fluopyram n’a pas réduit de manière substantielle la jambe noire, alors que les cultivars résistants se sont montrés systématiquement efficaces. En outre, les semences récoltées dans les parcelles où la jambe noire était moins importante présentaient souvent des niveaux plus faibles de contamination par l’inoculum de L. maculans.

Acknowledgements

The authors would like to thank Agriculture and Agri-Food Canada, the Canola Council of Canada, and SaskCanola for providing financial support via the Activity 31 of the Canadian Agricultural Partnership program. We also want to thank Linda McGregor, Tom Henderson, Paula Parks, Vanessa Healey, Rodney Werezuk, Wendi Dmytriw, Dr. Zhongwei Zou, Dr. Fei Liu, Dr. Liang Zhao, Rasanie Padmathilake, Sachithrani Kannangara, Anh Thi Dang, Denice Geverink, Rob Visser, Mike Erb and Judith Nugent-Rigby for their assistance during field or greenhouse trials.

Disclosure statement

No potential conflict of interest was reported by the author(s).

Supplementary material

Supplemental data for this article can be accessed online here: https://doi.org/10.1080/07060661.2024.2369750

Additional information

Funding

The work was supported by the Canola Council of Canada under the Canola Science Cluster, Canadian Agriculture Partnership program 2018-2023 [ASC-02 Activity 31].

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